Projet Fleur 2015-2018 : données décembre 2015- mars 2018 Echantillonnage de raveurs et de leurs ennemis naturels dans les champs de céréales et deux types d'habitats adjacents, marges herbeuses et bandes fleuries semées. Echantillonnage en période hivernale de Décembre à mi-Mars. Les organismes ont été échantillonnés par piège barbers, placés dans la culture proche des habitats adjacents et au sein de ces derniers

En 2019, 40 parcelles et 40 bordures de champs attenantes ont été sélectionnées, distribuées le long de la zone Armorique Sud : 20 parcelles ont été cultivées en céréales pures (blé, seigle ou triticale) et 20 parcelles en mélanges de céréales (blé, orge, épeautre...) et légumineuses (féverole, pois, vesse). Toutes les cultures ont été sélectionnées dans des exploitations en AB. Le terme « échelle locale » comprend un sous-échantillonnage de 18 parcelles échantillonnées le long de la ZA Sud (10 en mélange céréales/légumineuses, 8 en céréales), alors que le terme « échelle du paysage » comprend les 40 parcelles. Les pollinisateurs ont été séparés visuellement en 4 groupes : les abeilles domestiques, les bourdons, les abeilles sauvages et les syrphes. Ces groupes d'insectes ont été comptabilisés le long de deux transects parallèles de 50 mètres de longueur et 2 mètres de largeur (soit 100 m²), un le long de la bordure de champ et le deuxième à 50 m de la bordure dans la parcelle (ou au centre de la parcelle si la largeur de parcelle était < 100 m). Les comptages distinguent les insectes en nutrition sur une fleur (féverole, pois, adventice, flore spontanée de la bordure), sur le nectar-extra-floral de féverole, au repos (posés sur une partie végétative de la plante) ou en vol. Le comptage visuel a été réalisé à allure régulière pendant une durée minimale de 5 minutes (temps pour parcourir 50 mètres à faible allure sans insectes). Pour l’échelle paysagère, 3 sessions de relevés ont été réalisées entre mai et juillet (après récolte). Pour l’échelle locale, seuls les champs ont été échantillonnés (sans leur bordure), avec six sessions de relevés sur une période allant de début avril à mi-juin 2019 (récolte des cultures) suivant une fréquence d’un relevé tous les 15 jours.

Tests de repasse sur différents individus de différentes espèces de passereaux, en milieu urbain. Le temps de réponse est enregistré et plusieurs tests sont réalisés sur chaque individu. Zones de corridor et de matrice urbaine testées. Détails dans : Balbi, M. (2017). Validation de la fonctionnalité des continuités écologiques en milieu urbain : approches plurispécifiques et multi-sites. Thèse de doctorat en Biologie, Rennes 1. http://www.theses.fr/2017REN1B034  

En 2019, 12 parcelles cultivées en céréales pures (blé, seigle ou triticale) et 13 parcelles en mélanges de céréales (blé, orge, épeautre...) et légumineuses (féverole, pois, vesse) ont été échantillonnées. Toutes les cultures ont été sélectionnées dans des exploitations en AB. Pour évaluer le taux de parasitisme des pucerons de céréales, le nombre de « momies », c’est-à-dire de pucerons parasités au dernier stade, a été dénombré sur 30 plants (qui comportent plusieurs thalles) infestés par au moins un puceron et/ou momie. L’échantillonnage a été effectué sur 15 plants dans la section de 0 à 10m du bord de champ, et 15 plants de 10 à 50m. Le taux de parasitisme des pucerons par champs est calculé comme le nombre de pucerons momifiés divisé par le nombre total de pucerons (vivants et momifiés). Dans chaque parcelle, au moins 10 momies de pucerons des céréales ont été récoltées, ainsi que des momies de pucerons sur légumineuses tels qu’Acyrtosiphon pisum et Aphis fabae. Les momies ont été placées à 20°C jusqu’à émergence du parasitoïde adulte. Les parasitoïdes ainsi que les pucerons momifiés ont été identifiés morphologiquement à l’espèce de façon à obtenir un réseau trophique pucerons-parasitoïdes. La hauteur de la culture (3 mesures) et le recouvrement ont été effectués sur trois quadrats de 1 m², deux dans la strate centre et un dans la strate au bord. 8 échantillonnages ont été effectués de mars à juin.

En 2019, 12 parcelles cultivées en céréales pures (blé, seigle ou triticale) et 13 parcelles en mélanges de céréales (blé, orge, épeautre...) et légumineuses (féverole, pois, vesse) ont été échantillonnées. Toutes les cultures ont été sélectionnées dans des exploitations en AB. Les abondances de pucerons des céréales ont été mesurées sur 50 plants de céréales (qui comportent plusieurs thalles), dont 25 dans la section de 0 à 10m du bord de champ, et 25 de 10 à 50m. Sur chacun des plants, les pucerons ont été comptés et identifiés à l’espèce, en distinguant les adultes aptères, les adultes ailés et les larves. Trois espèces de pucerons peuvent être trouvées sur céréales : Sitobion avenae, Rhopalosiphum padi et Metopolophium dirhodum. L’échantillonnage a été effectué une à deux fois par mois de mars à juin 2019 avec 5 relevés, (jusqu’à disparition des pucerons dans le champ de céréales).

En 2019, 42 parcelles de céréales ont été échantillonnées, 21 en agriculture conventionnelle (AC) et 21 en agriculture biologique (AB). Les abondances de pucerons des céréales ont été mesurées sur 50 plants de céréales (qui comportent plusieurs thalles), dont 25 dans la section de 0 à 10m du bord de champ, et 25 de 10 à 50m. Sur chacun des plants, les pucerons ont été comptés et identifiés à l’espèce, en distinguant les adultes aptères, les adultes ailés et les larves. Trois espèces de pucerons peuvent être trouvées sur céréales : Sitobion avenae, Rhopalosiphum padi et Metopolophium dirhodum. La hauteur de la culture (5 mesures) et le recouvrement ont aussi été effectués au centre et au bord des parcelles. L’échantillonnage a été effectué deux fois au cours de la saison 2019, en mai et en juin.

Objectifs : 1. Etude de la dynamique de diffusion des pesticides dans les bandes enherbées selon un gradient de distance parcelle agricole-cours d’eau. 2. Etude de la dynamique de croissance et de l’état physiologique du couvert végétal des bandes enherbées. 3. Etude du potentiel de rétention/dégradation des pesticides du compartiment végétal des bandes enherbées. Démarches : Enquête auprès des agriculteurs de la ZAA pour connaitre les pesticides et doses épandus de 2010 à 2012 ; Echantillonnage de sol, d’eau du sol et de végétation à différents endroits des bandes enherbées, et à 10m de la bande au sein de la parcelle (sol uniquement), pour effectuer des analyses de pesticides ; Caractérisation du couvert végétal des bandes enherbées (recouvrement spécifique, biomasse aérienne, mesure des niveaux de chlorophylles). Caractérisation des réponses métaboliques d’espèces clés du couvert végétal selon le gradient parcelle-cours d’eau. Articles de références : A compléter par la suite (refs analyses pesticides, etc.) Programmes de recherche/financements : i. Projet « Phytobandes : Rôle(s) biologique(s) du compartiment végétal sur la dynamique des pesticides et des nitrates dans un contexte de bandes enherbées en environnement agricole » financé par le programme inter-organisme IngECOTech CNRS/CEMAGREF ; ii. Projet « ToPoBiov : Tolérance aux polluants au sein de la biodiversité végétale de sites contaminés », financé par la Fondation pour la Recherche sur la Biodiversité (FRB) ; iii. Bourse de thèse de la région Bretagne (2011-2014) iv. 2 financements OSUR (2012, 2015) v. Financement ECOBIO axe Ecologie des stress (2014)

Projet Fleur 2015-2018 : données décembre 2015- mars 2018 Echantillonnage de ravageurs et de leurs ennemis naturels dans les champs de céréales et deux types d'habitats adjacents, marges herbeuses et bandes fleuries semées. Echantillonnage en période hivernale de Décembre à mi-Mars. Les limaces ont été échantillonnées dans les parties de culture proche des habita.ts adjacents et au sein de ces derniers. L'échantillonnage a été réalisé par pièges barbers

Objectif : Ces données, issues d’une thèse (Andrade 2013), portent sur l’analyse des dimensions spatiales et temporelles du fonctionnement et de la diversité taxonomique et fonctionnelle d’une guilde écologique. Protocole : Collecte de momies (à vue dans le champ). Détermination des émergents sous loupe binoculaire. Construction du réseau trophique (2 méthodes : -R : .package "bipartite". http://cran.r-project.org/web/packages/bipartite/bipartite.pdf. Avec ce package, on peut assez rapidement construire un RTQ (réseau trophique quantitatif) avec une matrice du type hôte x parasitoïde, et la commande plotweb. -Méthode Editeur d’images : La méthode que j'ai utilisée exige un logiciel d'édition d'images. J'ai choisi d'utiliser Artweaver ( http://www.artweaver.de/en ), qui est un petit logiciel simple, efficace et gratuit. Sous ce logiciel, je commence par créer des barres de 50 pixels de hauteur et de X pixels de longueur, X correspondant au nombre de hôtes ou de parasitoïdes d'une espèce donnée dans mon réseau. Ensuite, pour créer les flèches, je commence par créer des barres de 2 pixels de hauteur x Y pixels de longueur, où Y est proportionnel au nombre d'interactions hôte-parasitoïde. Quand toutes les barres ont été correctement positionnées (à l'aide de la grille sous Artweaver, par exemple), je trace des flèches à partir des bases grises (barres de 2 pixels de hauteur), formant des triangles dont un angle se situe au milieu de chaque barre de parasitoïde. Ces flèches sont ensuite remplies. Le réseau trophique est disponible dans la thèse (lien ci-dessous). Article de référence : thèse de doctorat de l’université de Rennes 1. Thiago Andrade 2013. (http://tel.archives-ouvertes.fr/index.php?halsid=lnrmlg478b4ubl8k7lm7k7am36&view_this_doc=tel-00971811&version=1) Programme de recherche : Projet ANR Landscaphid (2010-2013)